出处: Gudiksen A, Hansen CC, van der Stede T, Daugaard AH, Schmidt JH, Ringholm S, Merimi M, Al-Obaidi FR, Kristoffersen AT, Zole E, Regenberg B, Kjøbsted R, Wojtaszewski J, Hellsten Y, Pilegaard H. MOTS-c improves intrinsic muscle mitochondrial bioenergetic health and efficiency in a PGC-1α/AMPK-dependent manner. Free Radic Biol Med. 2026 Mar 16;246:682-696.
作者介绍:


Abstract
摘要
线粒体来源肽是一类由线粒体 DNA 中短开放阅读框编码的小型调节肽。其中一种肽,即 12S rRNA-c 线粒体开放阅读框肽(MOTS-c),在外源性给予后已被证明可对全细胞和系统性代谢指标产生多种有益作用。然而,MOTS-c 介导的潜在线粒体生物能学效应在很大程度上被忽视。因此,本研究的主要目的是阐明 MOTS-c 是否以及如何调节骨骼肌(SkM)线粒体功能。我们使用两种不同的转基因小鼠品系证明,给予 MOTS-c 可增强肌肉线粒体生物能表现,并且这一过程依赖于转录共激活因子 PGC-1α 和细胞能量感应激酶 AMPK。这些效应似乎并不明显影响线粒体呼吸蛋白含量,提示其主要涉及线粒体内在改变,而非线粒体数量变化。此外,MOTS-c 处理降低了线粒体活性氧(ROS)释放和 ROS 相关蛋白损伤,表明其可显著减轻细胞氧化应激。RNA 测序数据显示,MOTS-c 处理的作用可能较为微妙地分布于多个线粒体参数,包括氧化还原处理、线粒体完整性和 OXPHOS 效率,共同提示了观察到的线粒体生物能功能改善的机制基础。尽管人体单腿膝伸肌运动期间间质 MOTS-c 水平升高,但动静脉差值未发生变化。这提示骨骼肌可能并不是运动反应中循环 MOTS-c 的来源。
Introduction
前言
Methods
研究材料与方法
01
小鼠实验
本研究使用 8 周龄诱导型肌肉特异性 PGC-1α 敲除(iMKO)小鼠²³、诱导型肌肉特异性 AMPKα1α2 双敲除(iMDKO)小鼠²⁴以及同窝 lox 对照(CTRL)小鼠。连续 3 天腹腔注射(IP)tamoxifen(80 mg/kg),并分别在最后一次 tamoxifen 注射后 2 周和 3 周开始实验方案,以实现 PGC-1α 和 AMPKα1/α2 的最佳删除。动物饲养于 12:12 h 明暗循环条件下,可自由摄取普通饲料(Chow,SAFE® D30,SAFE DIETS,Rosenberg,Germany)和饮水。本研究共使用 200 只小鼠,涵盖所有品系。对于每一种小鼠品系,根据基因型选择 10–11 只小鼠,并随机分配至各实验组。样本量基于大量采用相似干预的前期研究确定。
02
身体成分
采用 EchoMRI(EchoMRI 4in1,EchoMRI,Houston,TX,USA)通过磁共振成像测定总体脂肪量和瘦体重。
03
代谢笼与能量消耗
在处死前 1 周,于部分雌性小鼠中使用代谢笼(PhenoMaster,TSE Systems,Bad Homburg,Germany)测定能量消耗、呼吸交换率(RER = CO₂ 释放量/O₂ 摄取量)和自主活动。小鼠在代谢笼环境条件下适应至少 2 天,随后进行 24 h 数据采集。每 15 min 测量氧气和 CO₂ 通量,并通过光栅系统记录光束中断次数,作为动物自主活动的指标。数据结果分为光照期和黑暗期,激光束中断次数计算为每小时平均值。
04
急性运动方案
20 只雌性和 20 只雄性 PGC-1α iMKO 小鼠及同窝 LOX 对照(CTRL)小鼠被分配进行急性运动方案。每种基因型 10 只小鼠(由 5 只雌性和 5 只雄性组成)在正式急性跑台运动前连续 5 天适应跑台。急性运动包括 1 h 跑台运动,速度为 15 m/min,坡度为 10°(TSE Systems GmbH,Bad Homburg,Germany)。运动小鼠在恢复 2 h 时通过颈椎脱臼处死,而对照小鼠保持安静状态,并在与运动小鼠相同的时间处死。迅速取出股四头肌,并立即置于液氮中冷冻,用于后续分析。
05
运动训练方案
雌性 PGC-1α iMKO 小鼠及同窝 LOX 对照(CTRL)小鼠单笼饲养 5 周,其中一半小鼠可使用跑轮(Techniplast activity cage,wheel ø:23 cm;Tecniplast S.p.A.,Buguggiate VA,Italy)。CTRL 小鼠的跑轮偶尔被锁定,以使两种基因型小鼠的跑动距离相近。所有跑轮均在处死前 24 h 锁定。干预结束后,小鼠通过颈椎脱臼处死,迅速取出一侧股四头肌,并置于液氮中冷冻,随后储存在 −80 ℃,用于后续分析。
06
单次注射方案
雌性和雄性 PGC-1α iMKO 小鼠及同窝 LOX 对照(CTRL)小鼠单次腹腔注射 MOTS-c(5.0 mg/kg,Shaanxi Jeujon Bio-tech LTD,China;溶于生理盐水)或生理盐水,并在注射后 3 h 通过颈椎脱臼处死。股四头肌立即置于液氮中冷冻,并储存在 −80 ℃,用于后续分析。所采用的高浓度和给药持续时间基于既往发表的 MOTS-c 干预研究³˒²⁵。所用合成 MOTS-c 肽为高质量级别(CAS 号 1627580-64-6),经 HPLC 分析显示其纯度极高(≤99%)。通过凝胶电泳检测发现,该重组肽具有预期的 2–8 kDa 分子量。
07
重复注射方案
雌性 PGC-1α iMKO 小鼠及同窝 LOX 对照(CTRL)小鼠,以及 AMPKα1/α2 iMDKO 小鼠及同窝 lox 对照(CTRL)小鼠(每组 n = 10–13)接受 MOTS-c(5.0 mg/kg;Shaanxi Jeujon Bio-tech LTD,China;溶于生理盐水)或生理盐水腹腔注射,每周 5 天,持续 4 周(共 20 次注射)。小鼠按每笼 8–10 只分组饲养,不同基因型小鼠共同饲养,并可自由摄取普通饲料(Chow,SAFE® D30,SAFE DIETS,Rosenberg,Germany)和饮水。干预结束后,小鼠通过颈椎脱臼处死,收集躯干血,并迅速取出股四头肌。一侧股四头肌外侧部分立即置于 BIOPS 缓冲液中(50 mM K-MES、7.23 mM K₂EGTA、2.77 mM CaK₂EGTA、20 mM imidazole、20 mM taurine、5.7 mM ATP、14.3 mM phosphocreatine 和 6.56 mM MgCl₂,pH 7.1),用于高分辨率呼吸测定;另一侧股四头肌立即置于液氮中冷冻,并储存在 −80 ℃,用于后续分析。
08
线粒体呼吸与H₂O₂ 释放
从一侧股四头肌外侧部分分离重量为 1–3 mg 的肌纤维束,并在 BIOPS 缓冲液中加入 30 μg/mL saponin,于 4 ℃ 透化 30 min。随后将透化后的肌纤维束置于冰冷的线粒体呼吸介质中清洗 30 min(MiR05;0.5 mM EGTA、3 mM MgCl₂、60 mM lactobionate、20 mM taurine、10 mM KH₂PO₄、20 mM HEPES 和 110 mM D-sucrose,并含 1 g/L bovine serum albumin),再开始分析。采用 Oxygraph-2k 系统(Oroboros Instruments GmbH,Innsbruck,Austria)在 37 ℃、高氧条件下进行重复高分辨率呼吸测定,O₂ 浓度约为 450–200 μM。
09
RNA 提取与逆转录
从AC16心肌细胞基因组DNA中扩增YTHDF2启动子区域的功能结构域,并将其插入pGL3-Basic载体(MluI-XhoI)中。HEK293T细胞先在12孔板中使用Lipofectamine 2000 Reagent(Invitrogen)转染2 μg EP300敲低质粒24 h;随后再共转染40 ng Renila和2 μg突变型YTHDF2报告载体24 h。按照厂家说明,采用双荧光素酶报告检测试剂盒(Beyotime)检测firefly和renilla荧光素酶活性。
10
实时 PCR
11
RNA-seq
对于 RNA-seq,使用 NEBNext rRNA Depletion Kit v2(Human/Mouse/Rat)和 NEBNext Ultra II Directional RNA Library Prep Kit for Illumina;条形码标记使用 NEBNext Multiplex Oligos for Illumina(96 Unique Dual Index Primer Pairs)(New England Biolabs,Ipswich,USA),并按照制造商方案进行。RNA 经多重化处理后,在 Novaseq 6000(Illumina,Inc.,San Diego,USA)SP flow cell 上进行 2 × 75 核苷酸双端测序,平均每个样本获得 2500 万条单端读段(测序由 Rigshospitalet,Denmark 完成)。
12
裂解液制备
将约 25 mg 粉碎的股四头肌组织置于冰冷缓冲液中匀浆,该缓冲液含 HEPES(50 mM)、glycerol(10%)、Na-pyrophosphate(20 mM)、NaCl(150 mM)、NP-40(1%)、B-glycerophosphate(20 mM)、NaF(10 mM)、EDTA(1 mM)、EGTA(1 mM)、aprotinin(20 μg/mL)、leupeptin(10 μg/mL)、Na₃VO₄(2 mM)和 benzamidine(3 mM)。使用 TissueLyser II(Qiagen,Valencia,CA,USA)以 30 次/s 振荡 2 min 进行匀浆。随后于 4 ℃ 端对端旋转 1 h,再于 4 ℃、16,000 g 离心 20 min,方法如既往所述²⁸。采用 bicinchoninic acid 法(Pierce Biotechnology Inc.,Rockford,IL,USA)测定裂解液总蛋白含量。裂解液加入含 sodium dodecyl sulfate(SDS)的上样缓冲液,制备 western blotting 样本,方法如既往所述²⁹。
13
SDS-PAGE 与 western blotting
在测定 OXPHOS 蛋白含量后,western blotting 样本于 96 ℃ 煮沸 3 min。通过在手工灌制凝胶上加载等量蛋白,并随后使用 PVDF 膜(Immobilon-P Transfer membranes,Millipore,Bedford,MA,USA)和半干转膜进行 western blotting,以测定特定目标蛋白含量,方法如既往所述²⁸。采用 Ponceau 染色以确保蛋白从凝胶向膜的均匀转移。使用以下抗体检测相关蛋白:AMPKα1 protein(由 Lund University,Sweden 的 Professor Olga Goransson 惠赠)、AMPKα2 protein(Santa Cruz sc-19131)、AMPKThr172 phosphorylation(Cell Signaling #2535)、ANT1 protein(Thermo Fischer PA5-05074)、Catalase protein(Abcam ab1877)、MFN2 protein(Cell Signaling #9482)、Mitofilin protein(Proteintech 10179-1-AP)、MOTS-c protein(MyBioSource MBS542112)、OPA1 protein(BD Biosciences #612606)、OXPHOS proteins(Abcam ab110413)、SOD2(Millipore/Upstate 06–984)、UCP3 protein(Abcam ab180643)以及 PDH-E1α protein(由 University of Dundee,Scotland/UK 的 Professor Grahame Hardie 惠赠)。
14
Citrate synthase 活性
将肌肉组织置于含 0.05% bovine serum albumin 的 0.3 M phosphate buffer(pH 7.7)中匀浆,并使用 TissueLyser II(Qiagen,Valencia,CA,USA)以 30 次/s 振荡 2 min。按照制造商方案(Sigma-Aldrich,St. Louis,MO,USA)测定最大 citrate synthase 活性,并在基线及加入 oxaloacetate 后于 405 nm 动态测定吸光度(Multiscan,Thermo Scientific,Waltham,MA,USA)。
15
蛋白羰基化
按照制造商方案,使用 OxiSelect™ STA-307 荧光测定试剂盒检测羰基化(Cell Biolabs,CA,USA)。简言之,骨骼肌组织蛋白裂解液与 carbonyl fluorophore 孵育过夜。随后使用 trichloroacetic acid 沉淀蛋白,并用 acetone 清洗沉淀以去除游离荧光团。最终产物溶解于 guanidine hydrochloride 中,并通过荧光法测定羰基含量,同时与平行运行的新鲜荧光团标准品进行比较。
16
人体实验
本研究纳入 7 名男性受试者(年龄 29 ± 4 岁;体重 83 ± 11 kg;身高 186 ± 9 cm;VO₂peak 49 ± 7 mL·min⁻¹·kg⁻¹)。纳入标准为年龄 18–40 岁、BMI 18–27 的男性(表 1)。受试者通过医学检查、12 导联心电图以及肘前静脉采血进行筛查。排除标准为过去 5 年内吸烟或使用其他尼古丁产品、规律用药或存在慢性疾病。本研究经哥本哈根首都大区伦理委员会批准(H-21068447),并遵循《赫尔辛基宣言》指南实施。所有受试者在入组前均获得口头和书面知情同意。
17
峰值摄氧量评估与实验日流程
实验日前至少 48 h,受试者在自行车功率计上进行递增负荷运动测试,以测定峰值摄氧量(V̇O₂Peak)。实验日,要求受试者在筛查和实验日前 24 h 避免摄入咖啡因、饮酒和运动。局部麻醉后,在运动腿的股动脉和股静脉放置导管(20 gauge;Arrow International;Reading,PA,USA)用于采血,并从非运动腿的股外侧肌获取肌肉活检样本。此外,将 3 根微透析探针(CMA Microdialysis AB)插入股外侧肌,用于间质液采样。首先进行 10 min、10 W 运动,以尽量减少插入创伤引起的组织反应并提高可重复性。随后受试者再休息 90 min,然后收集透析液样本。采集静息样本后,进行急性运动,包括 3 组单腿膝伸肌运动,负荷分别为 10、20 和 10 W,每个强度持续 20 min。在静息状态和每次运动期间收集动静脉血样和微透析液。运动终止后 2 h,按照既往所述获取肌肉活检样本³⁰˒³¹。
18
微透析程序
为评估 MOTS-c 是否随运动在骨骼肌间质液中升高,研究者对 8 份储存的完全匿名骨骼肌微透析样本进行了测定,这些样本来自年龄 18–40 岁的健康男性。微透析样本不含细胞,因此无法进行遗传筛查。透析液在静息状态以及中等至高强度单腿膝伸肌运动期间收集,所用纵向微透析探针由半透膜构成,孔径为 960 kDa,内径/外径为 0.34/0.44 mm(Asahi Medical,Tokyo,Japan),方法如既往所述³²。探针插入大腿肌肉(股外侧肌)。
19
原代骨骼肌细胞分离与 AICAR 干预
从静息活检样本中获得约 250 mg[125–425 mg]骨骼肌(股外侧肌)。将分离得到的原代人肌细胞以 20 × 10⁴ 个细胞的浓度接种于 35 mm 培养皿中,培养皿预先涂覆 1% 不含 phenol red 的 Matrigel(Sigma-Aldrich),并加入原代生长培养基(PGM)³⁰˒³¹˒³³,于 37 ℃、8% CO₂ 条件下孵育。1 天后,部分 PGM 被融合培养基替换(DMEM,补充 10% HS、20 mM glucose 和 200 nM L-glutamine),以促进分化。在融合培养基中培养 1 天后,肌管在含 0.1% BSA 的培养基中进行 8 h 血清饥饿处理,随后用于实验。之后,将饥饿培养基替换为 PGM(对照细胞)或含 0.5 mM AICAR 的 PGM,处理 2 天后用 Trizol(Thermo fisher Scientific)收获细胞。这些体外实验用于研究 AMPK 介导的人骨骼肌细胞中 MOTS-c 和 PGC-1α 调控的可能性。所有培养和实验过程中均使用无 phenol red 培养基,以避免对分析和干预代谢结果产生干扰。
20
统计学
结果以均值 ± SE 表示,并纳入数据点。采用双因素方差分析(ANOVA)。若总体效应显著,则采用 Student Newman-Keuls 事后检验定位差异。分别采用 Shapiro–Wilk 和 Brown–Forsythe 检验评估数据正态分布和方差齐性。若某一数据集不满足 ANOVA 对方差齐性的前提条件,则对数据进行 log₁₀ 转换。对于比较两组的数据,采用 t 检验。统计分析使用 SigmaPlot 15.0(Systat,San Jose,CA)完成,图形使用 GraphPad Prism 10.4(GraphPad Software,San Diego,CA)制作。当 p < 0.05 时,认为结果具有统计学意义。
Results
研究结果
01
骨骼肌中运动诱导 MOTS-c 而非 mRNA 调控部分受 PGC-1α 调节
在单次 1 h 跑台运动恢复 2 h 后,从诱导型肌肉特异性 PGC-1α 敲除(iMKO)小鼠及同窝对照(CTRL)小鼠中获取股四头肌。CTRL 小鼠骨骼肌中的 PGC-1α 和 MOTS-c mRNA 均升高,而 PGC-1α iMKO 小鼠中 PGC-1α mRNA 的升高被抑制,但 MOTS-c mRNA 的升高未被抑制(图 1A 和 B),表明骨骼肌中基础状态及运动诱导的 MOTS-c mRNA 水平并不依赖于 PGC-1α。相应地,进行 5 周自愿跑轮运动的 CTRL 和 PGC-1α iMKO 小鼠在 PGC-1α 和 MOTS-c mRNA 方面表现出相似反应,提示运动训练诱导的 MOTS-c 转录调控不依赖于 PGC-1α(图 1C 和 D)。同样,骨骼肌 MOTS-c 蛋白随运动训练而增加,且两种基因型均出现升高,但 PGC-1α iMKO 小鼠骨骼肌中的 MOTS-c 蛋白低于 CTRL 小鼠,提示 MOTS-c 蛋白水平依赖于 PGC-1α 的存在(图 1E)。即便如此,对运动训练小鼠血浆的分析显示,训练或骨骼肌 PGC-1α 均不影响循环 MOTS-c 蛋白水平(图 1F)。

图1. A)PGC-1α mRNA 含量和 B)MOTS-c mRNA 含量,来自诱导型肌肉特异性 PGC-1α 敲除(iMKO)小鼠及同窝 lox 对照(CTRL)小鼠在静息状态和单次跑台运动后 2 h 的股四头肌样本(acute ex);n = 9–10。C)PGC-1α mRNA 含量,D)MOTS-c mRNA 含量,E)股四头肌样本中 MOTS-c 蛋白含量,以及 F)未训练(sedentary)和运动训练(trained)的同窝 PGC-1α iMKO 与 CTRL 小鼠血浆中的 MOTS-c 浓度;n = 8–10。数值以均值 ± SE 表示。mRNA 和蛋白含量以任意单位(AU)表示。*:与相同基因型内 saline 组相比差异显著,P < 0.05;#:与相同条件下 CTRL 小鼠相比差异显著,P < 0.05。
02
重复 MOTS-c 处理不影响 MOTS-c 和 PGC-1α mRNA 及蛋白调控
已有报道称,小鼠注射 MOTS-c 可增加 AMPK 磷酸化³˒⁶˒³⁴,细胞培养研究也提示 MOTS-c 与 PGC-1α 之间存在联系⁵˒⁶。为阐明 PGC-1α 是否是 MOTS-c 介导 AMPK 激活以及 PGC-1α 和 MOTS-c mRNA 调控所必需的,本研究向 CTRL 和 PGC-1α iMKO 小鼠腹腔注射高剂量重组 MOTS-c(5 mg/kg 体重)。急性 MOTS-c 给药未在 CTRL 或 PGC-1α iMKO 小鼠骨骼肌中进一步影响 PGC-1α mRNA、MOTS-c mRNA 或 AMPK 磷酸化,尽管观察到轻微的总体基因型效应(图 2A、B、C、D)。同样,重复注射重组 MOTS-c(每周 5 次,持续 4 周)并未明显增加 PGC-1α mRNA、MOTS-c mRNA 或内源性 MOTS-c 蛋白(图 2E、F、G、I)。然而,与基础状态和运动训练状态(图 1F)相似,PGC-1α iMKO 小鼠表现出正常的骨骼肌 MOTS-c mRNA 水平,但无论是否处理,其 MOTS-c 蛋白均较低(图 2F、G、I)。值得注意的是,重复 MOTS-c 注射仅在 PGC-1α iMKO 小鼠中增加了骨骼肌 AMPK 磷酸化(图 2H)。代表性免疫印迹结果见图 2I。能量感应激酶 AMPK 众所周知可被急性运动激活¹⁶,并参与启动运动适应性转录反应³⁵。因此,将原代人肌细胞与 AMP 类似物 AICAR 孵育,以明确 AMPK 是否可在人肌细胞中同时诱导 PGC-1α 和 MOTS-c。AICAR 处理增加了 PGC-1α 和 MOTS-c mRNA,提示单独激活 AMPK 足以在人肌细胞中诱导这两个靶标(图 2J 和 K)。

图2. A)PGC-1α mRNA 含量,B)MOTS-c mRNA 含量,C)AMPKThr172 磷酸化(phos),来自诱导型肌肉特异性 PGC-1α 敲除(PGC-1α iMKO)小鼠及同窝 lox 对照(CTRL)小鼠单次注射 saline 或 MOTS-c 后 3 h 的股四头肌样本;n = 9–10。D)代表性 western blot;E)PGC-1α mRNA 含量,F)MOTS-c mRNA 含量,G)MOTS-c 蛋白含量,以及 H)AMPKThr172 磷酸化,来自 PGC-1α iMKO 和 LOX CTRL 小鼠接受 saline 或 MOTS-c 重复注射 4 周后的股四头肌样本;n = 10–11。I)代表性 western blot。J)PGC-1α mRNA 含量和 K)MOTS-c mRNA 含量,来自用 PGM 或 PGM 加 AICAR 处理 48 h 的人肌细胞。数值以均值 ± SE 表示。*:与 CON 相比差异显著,且与相同基因型内 saline 组相比差异显著,P < 0.05;#:与相同条件下 CTRL 小鼠相比差异显著,P < 0.05。
03
MOTS-c 以 PGC-1α 依赖性方式增强线粒体生物能能力
通过对股四头肌肌纤维束进行高分辨率呼吸测定,评估 MOTS-c 处理对功能性生物能能力的影响。MOTS-c 处理增加了 CTRL 小鼠肌纤维束中偶联状态下亚最大 OXPHOS Complex I 驱动呼吸、最大 Complex I + II 驱动呼吸,以及 Complex I 驱动的 LEAK 呼吸,但在 PGC-1α iMKO 小鼠中未见上述变化(图 3A、B、C)。外源性加入 cytochrome c 作为样本内线粒体质量的指标,结果见图 3D。Citrate synthase 活性常被用作线粒体体积的标志物,该指标不受 MOTS-c 处理影响,但 PGC-1α iMKO 小鼠骨骼肌中的 citrate synthase 活性低于 CTRL 小鼠(图 3E)。将 Complex I 驱动呼吸除以 citrate synthase 活性后发现,该指标也仅在 CTRL 小鼠中随 MOTS-c 处理而升高,提示 MOTS-c 以 PGC-1α 依赖性方式增加了线粒体内在呼吸能力³⁶˒³⁷(图 3F)。

图3. A)亚最大 Complex I 刺激的 LEAK 线粒体呼吸(O₂ 通量),B)亚最大 Complex I 刺激的 OXPHOS 线粒体 O₂ 通量,C)最大 Complex I + Complex II 刺激的 OXPHOS O₂ 通量,D)线粒体质量控制,以相对于最大呼吸的 cytochrome c 分数反应表示,E)CS 活性,F)内在线粒体呼吸,即每单位线粒体体积的呼吸,以 O₂ 通量/CS 活性表示,G)经 O₂ 通量标准化的 H₂O₂ 释放,H)骨骼肌蛋白羰基化,I)线粒体 ADP 敏感性:O₂ 通量作为 ADP 浓度的函数,并拟合 Michaelis-Menten 动力学,J)推导得到的 Vmax,K)Km/Vmax,以及 L)ANT1 ADP/ATP translocase 蛋白含量,来自诱导型肌肉特异性 PGC-1α 敲除(PGC-1α iMKO)小鼠及同窝 LOX 对照(CTRL)小鼠接受 saline 或 MOTS-c 重复注射 4 周后的股四头肌。数值以均值 ± SE 表示。n = 9–11。I)代表性 western blot。蛋白含量以任意单位(AU)表示。*:与相同基因型内 saline 组相比差异显著,P < 0.05;#:与相同处理内 CTRL 小鼠相比差异显著,P < 0.05。
04
AMPK 表达是 MOTS-c 诱导生物能能力增加的部分必要条件
既往研究提示,MOTS-c 可增加 AMPK 活性¹⁹˒³⁸,且 AMPK 调控 PGC-1α³⁹。这提示 MOTS-c 诱导的、依赖于 PGC-1α 的呼吸能力增强可能通过 AMPK 介导。为验证这一假设,本研究在重复 MOTS-c 注射 4 周后,对诱导型肌肉特异性 AMPKα1/2 双敲除(AMPK iMDKO)小鼠的股四头肌组织进行分析。催化性 AMPK 亚基敲除得到验证(图 S2A、B、C);并且与其他干预结果相似(图 2C–H),MOTS-c 处理未增加 CTRL 小鼠骨骼肌中的 AMPK 磷酸化(图 S2C)。MOTS-c 处理使骨骼肌 PGC-1α mRNA 升高,且该作用不依赖于 AMPK;而 MOTS-c mRNA 仅在 CTRL 小鼠中随 MOTS-c 处理而增加,但未观察到骨骼肌 MOTS-c 蛋白的变化(图 S2D、E、F)。代表性免疫印迹结果见图 S2G。

05
MOTS-c 驱动的线粒体改善似乎不依赖于线粒体蛋白含量,且不影响底物利用、热量摄入或身体成分
本研究分析了小鼠骨骼肌线粒体含量和能力,以评估 MOTS-c 驱动线粒体功能变化的机制,以及 PGC-1α 在这些变化中的作用。在任一基因型当中,生理盐水和 MOTS-c 处理小鼠之间股四头肌 OXPHOS Complex I、II、III、IV 或 V 蛋白含量以及 PDH-E1α 蛋白含量均未发生变化。在生理盐水和 MOTS-c 处理条件下,PGC-1α iMKO 小鼠股四头肌中的 OXPHOS 和 PDH-E1α 蛋白含量均低于 CTRL 小鼠(图 5A 和 B)。本研究检测骨骼肌 UCP3 蛋白含量作为肌肉解偶联能力指标,结果显示基因型与处理之间存在总体交互作用,并且在 MOTS-c 处理条件下,CTRL 小鼠 UCP3 蛋白含量有高于 PGC-1α iMKO 小鼠的趋势(图 5C)。既往报道称,PGC-1α 和 MOTS-c 均参与抗氧化成分的调控¹¹˒²¹˒⁴⁰。MOTS-c 处理未改变肌肉抗氧化蛋白 superoxide dismutase 2(SOD2)和 catalase 的蛋白含量,但在生理盐水和 MOTS-c 处理条件下,PGC-1α iMKO 小鼠 SOD2 蛋白含量均低于 CTRL 小鼠(图 5D 和 E)。

06
重复 MOTS-c 处理通过 PGC-1α 调控线粒体相关基因表达
本研究对接受生理盐水或 MOTS-c 处理 4 周的 CTRL 和 PGC-1α iMKO 小鼠骨骼肌样本进行 RNA-seq。主成分分析显示,相对于 CTRL 生理盐水处理小鼠,CTRL MOTS-c 处理小鼠存在明显差异性的基因调控(采用 Canberra 距离的多维尺度分析[MDS]进行可视化,见图 6A)。尽管 PGC-1α iMKO 组与 CTRL 组明显不同,但 iMKO MOTS-c 处理小鼠与 iMKO 生理盐水处理小鼠之间未观察到这种处理效应,提示 PGC-1α 是 MOTS-c 驱动基因表达所必需的前提条件。

07
骨骼肌 MOTS-c 出现在间质中,但在人体中等强度运动期间未观察到其由骨骼肌释放至循环
本研究开展并分析了人体运动干预,以阐明运动诱导的骨骼肌 PGC-1α 和 MOTS-c 调控。60 min 单腿膝伸肌运动在人骨骼肌中诱导了 PGC-1α 和 MOTS-c mRNA 的相似升高(图 7A 和 B)。既往研究曾提出 MOTS-c 蛋白可能由骨骼肌释放至血液⁴˒⁴³,但本研究未检测到从静息到运动过程中 MOTS-c 的动脉、静脉或动静脉浓度差发生变化(图 7C、D、E)。因此,这些观察结果不支持收缩骨骼肌是循环中骨骼肌 MOTS-c 的主要来源。在本人体实验中,所用 100 kDa 微透析探针被发现不能允许 MOTS-c 通过,这一现象也常见于 cytokines 等化合物。随后通过含 MOTS-c 缓冲液浴的体外实验也验证了其不能通过。然而,在另一项既往健康年轻男性研究中使用的另一类型微透析探针所获得的透析液中,可以检测到 MOTS-c,并发现其从静息到与本研究强度相似的膝伸肌运动过程中升高,提示 MOTS-c 在骨骼肌收缩期间释放,并可能具有自分泌和旁分泌作用(图 7F)。

图7. 年轻健康男性受试者在静息状态以及急性单腿中等强度运动期间/之后的数据。A)人骨骼肌在静息状态(Rest)和运动后 2 h(Acute ex)的 PGC-1α mRNA 含量,B)MOTS-c mRNA 含量;n = 5–6。C)MOTS-c 的血浆动脉浓度;D)MOTS-c 的血浆静脉浓度;E)静息状态和运动期间 MOTS-c 的血浆静脉-动脉(v–a)浓度差(diff.)。负的 v–a 值表示肌肉摄取。F)静息状态和中等强度运动(Acute ex.)期间骨骼肌间质 MOTS-c 水平。数值以均值 ± SE 表示,n = 7–8。*:与 Rest 相比差异显著,P < 0.05。
Discussion
讨论
本研究的主要发现是,4 周 MOTS-c 处理增加了骨骼肌(SkM)非偶联呼吸、亚最大和最大 ADP 刺激呼吸以及 ADP 敏感性,并以依赖骨骼肌 PGC-1α 的方式降低 ROS 释放。在缺乏催化性 AMPKα1 和 α2 亚基的骨骼肌中,也观察到几乎相同的生物能学效应。综合来看,这些发现表明,MOTS-c 驱动的线粒体呼吸能力增强需要完整的 AMPK/PGC-1α 调控通路参与。MOTS-c 诱导的呼吸能力增加似乎属于内在性或质量性变化,即“每个线粒体”层面的改善,而不是由与生物能功能相关的线粒体蛋白大量增加所驱动。然而,RNA-seq 分析预测,MOTS-c 介导的呼吸增强是通过一系列线粒体 REDOX 处理、结构和酶促系统的转录变化实现的,这些变化共同促进线粒体功能改善。此外,人体急性运动增加了骨骼肌间质 MOTS-c 浓度,但未改变 MOTS-c 的动静脉差值。


