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?细胞免疫荧光实验超全攻略|新手必看✨

   日期:2025-11-03 10:02:39     来源:网络整理    作者:本站编辑    评论:0    
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?一、实验原理

简单来说,就是用荧光标记抗体去“钓”目标蛋白,通过荧光显微镜观察蛋白的位置和表达。

• 直接法:一抗直接带荧光,步骤少但成本高。

• 间接法:二抗带荧光,信号更强,灵敏度更高。

关键工具:荧光显微镜、特异性抗体、固定和透化处理。

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?二、主要用途

1️⃣蛋白定位:看蛋白在细胞的哪个位置(膜上、核里)。

2️⃣共定位研究:两种蛋白是否“住”在一起(比如线粒体和凋亡蛋白)。

3️⃣疾病诊断:检测病毒抗原(HPV)或自身免疫病抗体。

4️⃣药物研究:看药物对蛋白的影响。

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?三、溶液配制

|4%多聚甲醛固定液|4g多聚甲醛+100mL PBS,加热溶解(通风橱操作),固定细胞结构

|透化液(0.1%Triton X-100)|1mL Triton X-100+999mL PBS,让抗体能进入细胞

|封闭液(1%BSA)|1g BSA+100mL PBS,减少背景干扰

|抗体稀释液|1%BSA+0.1%Tween-20的PBS溶液,稀释抗体

|DAPI染液(核染色)|1μg/mL DAPI(溶于PBS),标记细胞核

|抗荧光淬灭封片剂|甘油+PBS(9:1)+抗淬灭剂(如DABCO),延长荧光信号保存时间

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?四、实验设置

1️⃣实验设计:

• 阳性对照:已知表达目标蛋白的细胞。

• 阴性对照:不加一抗或用同型IgG替代,排除假阳性。

2️⃣抗体选择:

• 一抗要验证特异性(文献/WB验证),二抗要匹配一抗种属(如兔一抗→抗兔二抗)。

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?五、实验步骤

1️⃣细胞准备:细胞爬片,接种至60%70%密度。

2️⃣固定与透化:4%多聚甲醛固定15分钟→0.1%Triton X-100透化10分钟。

3️⃣封闭:1%BSA封闭30分钟。

4️⃣一抗孵育:4℃过夜或室温2小时。

5️⃣二抗孵育:室温1小时,避光。

6️⃣核染色:DAPI染5分钟,避光。

7️⃣封片与观察:抗淬灭封片剂封片,荧光显微镜观察(尽快拍照)。

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?六、结果分析

1️⃣定性分析:看蛋白的荧光颜色和位置(膜/质/核)。

2️⃣定量分析:用ImageJ软件测荧光强度,统计阳性细胞比例

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⚠️七、注意事项

1️⃣避光操作:二抗孵育后全程避光,防止荧光淬灭。

2️⃣抗体保存:分装后-20℃保存,避免反复冻融。

3️⃣封片技巧:封片剂避免气泡,用量适中。

4️⃣对照设置:必须有阳性和阴性对照。

5️⃣洗涤充分:每次洗涤要彻底,减少背景噪音。

6️⃣细胞状态:避免细胞过度生长或死亡。

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?八、优缺点对比
见图

#细胞免疫荧光 #实验技巧 #蛋白定位
 
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